Technicien d'analyse de biologie médicale - H/F

Company:  Centre Hospitalier Universitaire de Grenoble
Location: Vienne
Closing Date: 30/07/2024
Salary: £20 - £40 Per Annum
Type: Temporary
Job Requirements / Description
DescriptionLa mission du service de Parasitologie-Mycologie est d’effectuer les analyses de biologie médicales nécessaires au diagnostic et au suivi des parasitoses et mycoses chez les patients hospitalisés ou non, ainsi que de conseiller les cliniciens dans ces prises en charge et de développer de nouveaux outils adaptés Les agents infectieux concernés sont d’une grande diversité (protozoaires, métazoaires, micromycètes…) et nécessitent donc des approches diagnostiques spécifiques. Notre mission de proximité s’applique aux patients du CHU et de l’agglomération Grenobloise. Nos missions de recours (expertises spécialisées sur des problèmes complexes) s’appliquent à l’ensemble de la région Rhône-Alpes, et pour certains aspects à l’ensemble du territoire national. Notre expertise est reconnue au plan international. Missions et activité du secteur «Mycologie» Recherche de champignons (levures, champignons filamenteux, champignons dimorphiques) dans les prélèvements venant de services à orientation médicale dans les prélèvements venant des services chirurgicaux et réanimation Recherche de champignons dans les hémocultures Recherche de champignons dans les prélèvements dermatologiques (dermatophytes, levures et contaminants) Contrôles mycologiques de l’alimentation du secteur stérile d’hématologie Ensemencement des prélèvements d’environnement Ensemencement des liquides : eaux, endoscopes souples Techniques utilisées Ensemencement des différents types de prélèvements mycologiques Lecture manuelle des boites et tubes des prélèvements ensemencés Lecture manuelle ou informatisées (ReadA Browser) des boites et tubes des boites et tubes incubés dans les étuves ou sur la chaine Kiestra Identification sur le spectromètre de masse Malditof Lecture d’un antifongigramme Examen direct (état frais, noir chlorazole, encre de chine) Réalisation de la coloration de Musto et lecture des lames colorées Techniques d’identification des filamenteux (bleu de lactophénol + Scotch) Missions et activité du secteur«Sérologie de la toxoplasmose» Analyses biologiques pour le diagnostic et le suivi de la toxoplasmose chez les patients immunocompétents et immunodéprimés (en particulier la toxoplasmose congénitale, oculaire, disséminée) Techniques utilisées Dosage des IgG et IgM anti-toxoplasmiques en ELISA sur l’automate Architect Dosage des IgG et Ig M anti-toxoplasmiques en ELISA sur l’automate VIDAS Détermination de l’avidité IgG ELISA Toxo sur l’automate VIDAS Réalisation de la Technique ISAGA pour la détection des IgM et IgA anti-toxoplasmiques Réalisation de la technique Western Blot toxoplasma IgG/IgM (mère/enfant) Réalisation de la technique Western Blot IgGII (confirmation de la présence d’IgG) Réalisation de la technique du Toxoscreen Réalisation de la technique Western Blot toxoplasma IgG/IgA (humeur aqueuse/sang) Missions et activité du secteur «Sérologies parasitaires et fongiques» Sérologies parasitaires : amibiase, paludisme, distomatose, bilharziose, filariose, leishmaniose, toxocarose, trichinose, hydatidose, échinococcose alvéolaire Alvéolites : poumon de fermier-poumon d'éleveur d'oiseaux, alvéolites d'origine variée Sérologies fongiques :Ag Cryptococcus, Ag aspergillaires et Ag Candida, Ac aspergillaires et Ac candidosiques Techniques manuelles Dosage des Ig par technique ELISA (Kits Bordier) ou autre Détection des Ig par Western Blot (technique de confirmation Recherche des anticorps précipitants (Ig) par des techniques d’immunoélectrophorèse (IEP), d’immunodiffusion (ID) et d’electrosynérèse (ES) Techniques automatisées Dosage par technique ELISA sur EVOLIS :Sérologie Aspergillaire, Sérologie Candida, Antigénémie Aspergillaire, Antigénémie Candida Missions et activité du secteur «Full-automatic J0» Encemencement des urines et des prélèvements réalisés sur tubes ESWAB sur la chaine KIESTRA pour la bactériologie et la mycologie Techniques utilisées Ensemencement automatisé des échantillons en Full automatique (Bactériologie Hygiène hospitalière –Parasitologie Mycologie) sur la chaine Kiestra Gestion des boites et des bons pour les prélèvements qui ne sont pas incubés dans les étuves intelligentes. Gestion des prélèvements après passage sur la chaîne Missions et activité du secteur «Biologie moléculaire» Recherche d’ADN Toxoplasma gondii dans le sang, le liquide amniotique (LA), placenta, le lavage broncho-alvéolaire, le liquide céphalorachidien, l’humeur aqueuse et les biopsies Recherche d’ADN Acanthamoeba dans les prélèvements oculaires Recherche d’ADN d’Aspergillus fumigatus dans le sérum Recherche d'ADN de microsporidies (Enterocytozoon bieneusi et Encephalitozoon intestinalis) ou deCryptosporidium (C. parvum et C. hominis uniquement), Giardia intestinalis et Entamoeba histolytica dans les selles Recherche de Pneumocystis jirovecii dans les prélèvements respiratoires : lavages broncho-alvéolaires ou, à défaut, broncho-aspirations ou crachats. Techniques utilisées Extraction d'ADN avec le kit Qi Amp DNA mini à partir de sangs et de liquides peu cellulaires à partir de placentas, biopsies et liquides très cellulaires Préparations des sondes et amorces Techniques automatisées d’extraction, d’extraction/PCR ou PCR seules BDMAx, LC480, E-Mag, Easymag Missions et activité du secteur «Examen direct – Coprologie» Diagnostic des parasitoses par examen macroscopique ou microscopique Visualisation DIRECTE (avec ou sans coloration) d’un parasite dont la présence, quel que soit l’aspect quantitatif, suffit à poser le diagnostic de parasitose active (impliquant le plus souvent une sanction thérapeutique). Les parasites suivants sont concernés : Protozoaires sanguins : Plasmodium spp. (exception faite des cas des porteurs ‘sains’ négligeables sous nos climats), Leishmania sp., Trypanosoma sp., Toxoplasma. Protozooses digestives : formes hématophages d’E. histolytica, Giardia intestinalis, D. fragilis ; Kystes ou formes végétatives d’Acanthamoeba spp. issus d’un grattage cornéen ; Helminthes adultes : oxyures, trichocéphales, ankylostomes, ascaris ; anneaux de Taenia ; OEufs d’helminthes : bilharzies, trichocéphales, oxyures, Ascaris, ankylostome, grande douve, petite douvede chine, Paragonimus, Taenia, Hymenolepis ; Larves d’helminthes : anguillules ou Ankylostomidae, Loa loa, Onchocerca, Trichinella, Anisakis ; Microfilaires (loase, filarioses lymphatiques, onchocercose) ; Kystes hydatiques : crochets, protoscolex ou autres éléments de vésicules proligères ; Ectoparasites : poux (de tête et de corps), morpions, sarcoptes, puce chique, myiases ; Coccidies : Cryptosporidium, Cyclospora, Isospora ; Microsporidies ; Pneumocystis jirovecii Missions transversales Gestion des prélèvements de la phase pré analytique, analytique et post analytique Gestion des prélèvements envoyés à l’extérieur Bonne connaissance et appréhension de l’urgence en Parasitologie-Mycologie (ex: prise en charge rapide pour un diagnostic de paludisme) Préparation de différents tampons et colorations Saisie et validation technique des résultats après vérification de leur concordance avec antériorités éventuelles et par rapport aux traitements suivis Mise en sérothèque et souchothèque de certains prélèvements Participation au Contrôle Qualité Externe (CQE) et Contrôle Qualité Interne (CQI) Gestion des stocks: réactifs et consommables Participation aux évaluations qualitatives lors des Appel Offres Participation à la maintenance des équipements Participation à la formation d’élèves stagiaires filière métier base (techniciens laboratoire) Participation à la démarche qualité du service (rédaction, mise à jour Procédure, traçabilité quotidienne…) Information de manière systématique des biologistes et du cadre de santé lors de tout problème rencontré Profil recherchéProfessionnel motivé, organisé et capable de travailler en équipe #J-18808-Ljbffr
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